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| Listado de Análisis Clínicos |    |
| 17HPN | 17-HIDROXIPROGESTERONA NEONATAL, GOTA DE SANGRE SECA |  |
| Plazos | 7 Días hábiles. |
| Indicaciones para el laboratorio | Las muestras deben ser obtenidas desde las 48 horas del nacimiento hasta los 7 días de vida, como máximo.Solicitar al laboratorio el soporte de papel apropiado para la obtención y transporte de la muestra.
Método de obtención de las muestras: 1. Entibiar el talón del bebé con una compresa tibia, punzarlo con una lanceta desechable, formar con el pulgar y el índice un pliegue de la piel en lugar de la punción y oprimir para obtener las gotas de sangre 2. Embeber con la sangre cada uno de los círculos marcados en el papel hasta que la sangre se distribuya homogéneamente por toda la superficie del círculo en ambas caras del mismo. 3. Completar cuidadosamente todos los datos solicitados en el soporte y colocarlo en un envase tipo Ziploc para proteger de la humedad. Si es necesario adjuntar planilla de datos clínicos. |
Instrucciones al paciente  |
N.A. |
| Método | Fluoroinmunoensayo con tecnología DELFIA ® |
| Valores de referencia | Hasta 22 ng/mL |
| Modificado/Vigencia | 14.05.2026 |
| 17HPO | 17-HIDROXIPROGESTERONA, SUERO | |
| Plazos | 2 Días hábiles |
| Indicaciones para el laboratorio | Muestra: Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. Recomendaciones: Las personas del sexo femenino deben efectuar el estudio en el día del ciclo menstrual indicado por el médico. Si no ha sido especificado es preferible realizarlo entre el los días 1 y 5 del ciclo; contando como primer día el de comienzo de la menstruación. Las pacientes que no menstruan pueden realizarse el estudio en cualquier día. |
| Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Las personas del sexo femenino deben efectuar el estudio en el día del ciclo menstrual indicado por el médico. Si no ha sido especificado es preferible realizarlo entre el los días 1 y 5 del ciclo; contando como primer día el de comienzo de la menstruación. Las pacientes que no menstruan pueden realizarse el estudio en cualquier día. |
| Método | Quimioluminiscencia |
| Valores de referencia | Hombre adulto 0.5 a 2.1 ng/ml Mujeres: Fase folicular: 0.1 a 0.8 ng/ml Fase lútea: 0.6 a 2.3 ng/ml Pos menopausia: 0.1 a 0.6 ng/ml 1-3 meses hasta 13.7 ng/ml Prepuberes hasta 1.7 ng/ml |
| Modificado/Vigencia | 31.03.2026 |
| 20210 | GEN DEL FACTOR II (PROTROMBINA), POLIMORFISMO G20210A, SANGRE PERIFÉRICA | |
| Plazos | 25 Días hábiles |
| Indicaciones para el laboratorio | Remitir al laboratorio analítico 5,0 ml de sangre periférica con EDTA, en el día de obtención de la muestra. |
| Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método | Real Time PCR |
| Valores de referencia | La presencia de la mutación G20210A en el gen del Factor II (Protrombina), está asociada a eventos trombóticos. Genotipo Homocigoto Normal (20210GG). No presenta riesgo. Genotipo Heterocigoto (20210GA): Riesgo moderado Genotipo Homocigoto Mutado (20210AA): Riesgo aumentado. |
| Modificado/Vigencia | 23.12.2024 |
| 21HDR | ANTICUERPOS ANTI 21 HIDROXILASA | |
| Plazos | 24 Días hábiles |
| Indicaciones para el laboratorio | Remitir al laboratorio analítico 1,0 ml de suero. |
| Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método | Elisa |
| Valores de referencia | Negativo |
| Modificado/Vigencia | 10.07.2025 |
| 5HI24 | ACIDO 5 - HIDROXIINDOLACETICO (5-HIAA), ORINA DE 24 HORAS | |
| Plazos | 10 Días hábiles |
| Indicaciones para el laboratorio | El laboratorio debe proporcionar el conservante (10 ml de ácido clorhídrico 6M para adultos o 5,0 ml para los niños) y las instrucciones para la prueba (ver INSTRUCCIONES AL PACIENTE). Verificar que el pH de la muestra esté entre 2 y 4. Remitir al laboratorio analítico una alícuota de 3 ml de orina de 24 horas con el conservante,congelada. Consignar la diuresis; las muestras remitidas sin este dato no serán procesadas. |
| Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio: Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de 2 litros de capacidad (mínimo 1,5 litros). Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua. Solicitar al laboratorio el frasco con conservante (Ácido clorhídrico; 10 cm3 para adultos o 5 cm3 para niños). Precaución: El ácido clorhídrico es muy corrosivo; evitar derrames y el contacto con la piel; no dejar al alcance de los niño
Preparación para la prueba: Prepararse para la prueba durante tres días, y al cuarto, continuando con el régimen comenzar la recolección de la orina. Recolectar orina de 24 horas con ácido clorhídrico. No realizar ejercicios extremos desde el día anterior a la recolección de la muestra. Es conveniente comenzar a recolectar la orina por la mañana temprano (ej. 7:30 a 8:30). Es conveniente no efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de cada micción. Durante 3 días antes de recolectar la orina: No tomar aspirinas y suspender toda medicación que no le haya prescripto su médico. No comer tomates, berenjenas, paltas, ananá, ciruelas, nueces o maníes. No comer alimentos que contengan vainilla o esencia de vainilla, como postres, chocolate, helados, etc. No tomar café, té o mate. No tomar bebidas alcohólicas, o hacerlo con moderación. Desde el día antes: No fumar. Al cuarto día efectuar la recolección de la orina, continuando con el mismo régimen.
Recolección de orina de 24 horas: 1) En la mañana del día de la prueba, continuando con el régimen, al levantarse orinar normalmente, desechando esa orina. Anotar la hora en que se hizo. 2) A partir de ese momento coloque el conservante en el recipiente de la recolección y junte todas las orinas que elimine durante el día y la noche siguiente. Mantener toda la orina recolectada en heladera o en lugar fresco, preservándola del calor. 3) Si el recipiente no es suficiente puede continuar con otro de las mismas características que el anterior. 4) En la mañana siguiente, a la misma hora en que desechó la primera orina, orinar por última vez y recolectar en el recipiente (si además de este estudio su médico le solicitó Orina Completa, la primera micción del día siguiente debe recolectarse en un frasco aparte). 5) Llevar el o los recipientes al laboratorio en cuanto sea posible. Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario que la recolección de las orinas de las 24 horas sea completa sin que se pierda ninguna porción, aunque para ello sea necesario usar varios recipientes y llevarlos al laboratorio. También es muy importante que observe estrictamente los horarios de comienzo y final, no continuando más allá de las 24 horas.
“Devolver al laboratorio el frasco del conservante una vez utilizado”
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| Método | HPLC (Cromatografía Líquida de Alta Performance) |
| Valores de referencia | 1.0 a 10.0 mg/24 hs |
| Modificado/Vigencia | 02.02.2026 |
| 5NUC | 5'- NUCLEOTIDASA , SUERO | |
| Plazos | 1 Días hábiles |
| Indicaciones para el laboratorio | Remitir al laboratorio como mínimo 1,0 ml de suero. Almacenar a 2 - 8 ºC hasta 7 días. Luego conservar congelado a -20 ºC |
| Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método | Enzimático |
| Valores de referencia | Hasta 10.0 UI/l |
| Modificado/Vigencia | 08.04.2026 |
| A1CTUR | HEMOGLOBINA GLICOSILADA (A1C), SANGRE | |
| Plazos | 1 Dia hábil |
| Indicaciones para el laboratorio | Remitir al laboratorio analítico 2.5 ml de sangre con EDTA. |
| Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno.
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| Método | Inmunoturbidimetría |
| Valores de referencia | 4.8 a 5.9 % (IFCC: 30 a 41 mmol/mol)
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| Modificado/Vigencia | 31.01.2024 |
| A2APL | ALFA 2 ANTIPLASMINA, ACTIVIDAD, PLASMA | |
| Plazos | 10 Días hábiles |
| Indicaciones para el laboratorio | Remitir al laboratorio 3,0 ml de plasma citratado, congelado (-18°C a -20°C). |
| Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método | Funcional-Cromogénico |
| Valores de referencia | 80 a 120% |
| Modificado/Vigencia | 21.08.2025 |
| A2MAC | ALFA 2 MACROGLOBULINA, SUERO | |
| Plazos | 10 Días hábiles |
| Indicaciones para el laboratorio | Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 mL de suero |
| Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método | Inmunodifusión radial |
| Valores de referencia | 107 - 450 mg/dl |
| Modificado/Vigencia | 07.11.2018 |
| A4 | ANDROSTENODIONA, SUERO | |
| Plazos | 3 Días hábiles |
| Indicaciones para el laboratorio | Muestra: Remitir al laboratorio analítico como mínimo 1,0 ml de suero. Recomendaciones: Las personas del sexo femenino deben efectuar el estudio en el día del ciclo menstrual indicado por el médico. Si no ha sido especificado es preferible realizarlo entre el los días 1 y 5 del ciclo; contando como primer día el de comienzo de la menstruación. Las pacientes que no menstruan pueden realizarse el estudio en cualquier día. |
| Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. Las personas del sexo femenino deben efectuar el estudio en el día del ciclo menstrual indicado por el médico. Si no ha sido especificado es preferible realizarlo entre el los días 1 y 5 del ciclo; contando como primer día el de comienzo de la menstruación. Las pacientes que no menstruan pueden realizarse el estudio en cualquier día. |
| Método | Quimioluminiscencia |
| Valores de referencia | Hombre adulto: 0.6 a 3.1 ng/ml Mujer adulta: 0.3 a 3.3 ng/ml Postmenopausia: 0.3 a 1.0 ng/ml Prepúberes: 0.3 a 1.0 ng/ml |
| Modificado/Vigencia | 09.02.2026 |
| ABLCR | ANTIGENOS BACTERIANOS, LÍQUIDO CEFALORRAQUÍDEO (Neisseria meningitidis grupos A, B, C | |
| Plazos | 4 días hábiles |
| Indicaciones para el laboratorio | Remitir la laboratorio de proceso líquido cefalorraquídeo en envase estéril. Indicar la edad del paciente. Laboratorio de Proceso:Clinica Los Arcos – Sector Bacteriologia –TE 4778 4628 |
| Instrucciones al paciente |
N.A.: |
| Método | Aglutinación de partículas |
| Valores de referencia | Negativo |
| Modificado/Vigencia | 16.11.2021 |
| ACAQU | NMO ANTICUERPOS IgG (AQUAPORINA 4) | |
| Plazos | 15 Días hábiles |
| Indicaciones para el laboratorio | Remitir al laboratorio 1 ml de suero o LCR
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| Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método | CBA (cell-based assay) |
| Valores de referencia | Negativo: Valor de Corte 1/10 |
| Modificado/Vigencia | 26.02.2026 |
| ACARN | ACILCARNITINA, GOTA DE SANGRE SECA (Carnitina total y esterificada, Índices de acetilcarnitin | |
| Plazos | 18 Días hábiles |
| Indicaciones para el laboratorio | Solicitar al laboratorio el soporte de papel apropiado para la obtención y transporte de la muestra. Método de obtención de las muestras: BEBES :1. Entibiar el talón del bebé con una compresa tibia, punzarlo con una lanceta desechable, formar con el pulgar y el índice un pliegue de la piel en lugar de la punción y oprimir para obtener las gotas de sangre; 2. Embeber con la sangre cada uno de los círculos marcados en el papel hasta que la sangre se distribuya homogéneamente por toda la superficie del círculo en ambas caras del mismo. NIÑOS Y ADULTOS: Sangre venosa, sin agregado de anticoagulante, en soporte de papel apropiado . Completar cuidadosamente todos los datos solicitados en el soporte y colocarlo en un envase tipo Ziploc para proteger de la humedad. Es necesario adjuntar planilla de datos clínicos. |
| Instrucciones al paciente |
N.A.. |
| Método | Espectofotometría de Masa en Tandem |
| Valores de referencia | Valores en umol/l: Acetilcarnitina: 7,0 a 48,0 Carnitina libre: 13,0 a 52,0 Propionil carnitina: 0,21 a 4,70 Malonilcarnitina: 0,02 a 0,35 Butirilcarnitina: 0,05 a 0,85 Hidroxibutirilcarnitina: 0,04 a 0,39 Metilmalonilcarnitina: 0,05 a 0,70 Tiglilcarnitina: 0,01 a 0,23 Isovalerilcarnitina: 0,04 a 0,61 Hidroxiisovalerilcarnitina: 0,04 a 0,54 Glutarilcarnitina: 0,01 a 0,28 Hexanoilcarnitina: 0,05 a 0,40 Adipilcarnitina: 0,01 a 0,30 Octanoilcarnitina: 0,01 a 0,36 Decenoilcarnitina: 0,02 a 0,70 Decanoilcarnitina: 0,01 a 0,29 Dodecanoilcarnitina: 0,01 a 0,10 Hidroxidodecanoilcarnitina: 0,01 0,15 Tetradecadienoilcarnitina: 0,06 a 0,25 Tetradecenoilcarnitina: 0,08 a 0,55 Tetradecanoilcarnitina: 0,01 a 0,23 Hidroxitetradecanoilcarnitina: 0,01 a 0,09 Hexadecenoilcarnitina: 0,02 a 0,51 Palmitoilcarnitina: 0,25 a 9,0 Hidroxihexadecenoilcarnitina: 0,01 a 0,32 Hidroxihexadecanoilcarnitina: 0,01 a 0,26 Linoileilcarnitina: 0,03 a 1,52 Hidroxilinoleilcarnitina: 0,01 a 0,05 Oleilcarnitina: 0,50 a 3,10 Hidroxioleilcarnitina: 0,01 a 0,16 Estearoilcarnitina: 0,09 a 2,30 Hidroxiestearoilcarnitina: 0,01 a 0,12
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| Modificado/Vigencia | 05.02.2025 |
| Descargar Archivo | PRA-002-51-Estudios_de_Errores_Congenitos_del_Metabolismo.pdf |
| ACASC | ÁCIDO ASCORBICO (VITAMINA C) | |
| Plazos | 20 Días hábiles |
| Indicaciones para el laboratorio | Remitir al laboratorio analítico como mínimo 0.5 ml de suero congelado y al abrigo de la luz. |
| Instrucciones al paciente |
Concurrir al Laboratorio en condiciones de ayuno de 8 horas. |
| Método | HPLC |
| Valores de referencia | 0.20 a 2.00 mg/dL
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| Modificado/Vigencia | 16.12.2025 |
| ACBIL | ÁCIDOS BILIARES TOTALES, SUERO | |
| Plazos | 1 día hábil |
| Indicaciones para el laboratorio | Remitir al laboratorio como mínimo 1,0 ml de suero. “Enviar mail de aviso a Recepcion DA, LOGISTICA Y LAB.OTAMENDI.” |
| Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método | Enzimático colorimétrico |
| Valores de referencia | 2 a 10 umol/l |
| Modificado/Vigencia | 24.02.2025 |