| Listado de Análisis Clínicos |  |
| #PLT | PLAQUETAS, RECUENTO |  |
| Plazos | 1 Día hábil |
Instrucciones al paciente  |
Concurrir al Laboratorio en condiciones de ayuno de 8 horas. |
| Método | Principio: SYSMEX |
| Valores de referencia | 150.000 a 440.000/mm³ |
| 17HPN | 17-HIDROXIPROGESTERONA NEONATAL, GOTA DE SANGRE SECA | |
| Plazos | 7 Días hábiles |
| Instrucciones al paciente |
N.A. |
| Método | Fluoroinmunoensayo con tecnología DELFIA ® |
| Valores de referencia | Hasta 22 ng/mL |
| 17HPO | 17-HIDROXIPROGESTERONA, SUERO | |
| Plazos | 5 Días hábiles |
| Instrucciones al paciente |
Las personas del sexo femenino deben efectuar el estudio en el día del ciclo menstrual indicado por el médico. Si no ha sido especificado es preferible realizarlo entre el los días 1 y 5 del ciclo; contando como primer día el de comienzo de la menstruación. Las pacientes que no menstruan pueden realizarse el estudio en cualquier día. Concurrir al Laboratorio en condiciones de ayuno de 8 horas. |
| Método | RIA (Radioinmunoensayo) |
| Valores de referencia | Hombres: 0,59 - 3,44 mg/ml |
| 20210 | GEN DEL FACTOR II (PROTROMBINA), POLIMORFISMO G20210A, SANGRE PERIFÉRICA | |
| Plazos | 10 Días hábiles |
| Instrucciones al paciente |
Concurrir al Laboratorio en condiciones de ayuno de 8 horas |
| Método | Real Time PCR |
| Valores de referencia | La presencia de la mutación G20210A en el gen del Factor II (Protrombina), está asociada a eventos trombóticos. Genotipo Homocigoto Normal (20210GG). No presenta riesgo. Genotipo Heterocigoto (20210GA): Riesgo moderado Genotipo Homocigoto Mutado (20210AA): Riesgo aumentado. |
| 5HI24 | ACIDO 5 - HIDROXIINDOLACETICO (5-HIAA), ORINA DE 24 HORAS | |
| Plazos | 12 Días hábiles |
| Instrucciones al paciente |
Para la realización del estudio es necesario: • Consultar con su médico los medicamentos que estrictamente deba tomar y suspender los demás. • Proveerse de un recipiente plástico rígido, limpio y seco, de 2 litros de capacidad (mínimo 1,5 litros). Se deben usar bidones o botellas de plástico rígido que no hayan contenido detergentes, lavandina o gaseosas, lavados con abundante agua. •Solicitar al laboratorio el frasco con conservante (Ácido clorhídrico; 10 cm3 para adultos o 5 cm3 para niños). Precaución: El ácido clorhídrico es muy corrosivo; evitar derrames y el contacto con la piel; no dejar al alcance de los niños.. Prepararse para la prueba durante tres días, y al cuarto, continuando con el régimen comenzar la recolección de la orina. • Recolectar orina de 24 horas con ácido clorhídrico. Preparación para la prueba: • No realizar ejercicios extremos desde el día anterior a la recolección de la muestra. • Es conveniente comenzar a recolectar la orina por la mañana temprano (ej. 7:30 a 8:30). • Es conveniente no efectuar la recolección de orinas durante la menstruación. Si es necesario hacerlo en este período es recomendable colocar un tampón vaginal y lavar la zona con abundante agua antes de cada micción. • Durante 3 días antes de recolectar la orina: No tomar aspirinas y suspender toda medicación que no le haya prescripto su médico. No comer tomates, berenjenas, paltas, ananá, ciruelas, nueces o maníes. No comer alimentos que contengan vainilla o esencia de vainilla, como postres, chocolate, helados, etc. No tomar café, té o mate. No tomar bebidas alcohólicas, o hacerlo con moderación. • Desde el día antes: No fumar. • Al cuarto día efectuar la recolección de la orina, continuando con el mismo régimen. Recolección de orina de 24 horas: 1. En la mañana del día de la prueba, continuando con el régimen, al levantarse orinar normalmente, desechando esa orina. Anotar la hora en que se hizo. 2. . A partir de ese momento coloque el conservante en el recipiente de la recolección y junte en el mismo todas las orinas que elimine durante el día y la noche siguiente. Mantener toda la orina recolectada en heladera o en lugar fresco, preservándola del calor. 3. Si el recipiente no es suficiente, trasvasar aproximadamente la mitad de la orina recogida a otro recipiente y luego colocar alternadamente en uno y otro todas las orinas siguientes. Si es necesario, hacer lo mismo con un tercer recipiente. 4. En la mañana siguiente, a la misma hora en que desechó la primera orina, orinar por última vez y recolectar en el recipiente (si además de este estudio su médico le solicitó Orina Completa, la primera micción del día siguiente debe recolectarse en un frasco aparte). 5. Llevar todos los recipientes al laboratorio en cuanto sea posible. Muy importante: Para obtener resultados válidos y confiables es necesario que la recolección de las orinas de las 24 horas sea completa sin que se pierda ninguna porción, aunque para ello sea necesario usar varios recipientes y llevarlos al laboratorio. También es muy importante que observe estrictamente los horarios de comienzo y final, no continuando más allá de las 24 horas. |
| Método | HPLC (Cromatografía Líquida de Alta Performance) |
| Valores de referencia | Menor o igual de 8 mg/24 hs |
| 5NUC | 5'- NUCLEOTIDASA , SUERO | |
| Plazos | 4 Días hábiles |
| Instrucciones al paciente |
Concurrir al laboratorio en condiciones de ayuno de 8 horas. |
| Método | Enzimático |
| Valores de referencia | Hasta 9 UI/L |
| A1C | HEMOGLOBINA GLICOSILADA (A1C) por HPLC , SANGRE | |
| Plazos | 2 Días hábiles |
| Instrucciones al paciente |
No requiere ayuno. |
| Método | HPLC Este método cumple con la certificación de la NGSP |
| Valores de referencia | 4.3% a 6.1 % |
| A2MAC | ALFA 2 MACROGLOBULINA, SUERO | |
| Plazos | 10 Días hábiles |
| Instrucciones al paciente |
Concurrir al laboratorio en condiciones de ayuno de 8 horas |
| Método | Inmunodifusión radial |
| Valores de referencia | 107 - 450 mg/dl |
| A4 | ANDROSTENODIONA, SUERO | |
| Plazos | 5 Días hábiles |
| Instrucciones al paciente |
Las personas del sexo femenino deben efectuar el estudio en el día del ciclo menstrual indicado por el médico. Si no ha sido especificado es preferible realizarlo entre el los días 1 y 5 del ciclo; contando como primer día el de comienzo de la menstruación. Las pacientes que no menstruan pueden realizarse el estudio en cualquier día. Concurrir al Laboratorio en condiciones de ayuno de 8 horas. |
| Método | Quimioluminiscencia |
| Valores de referencia | Hombres: 0,4 a 2,6 ng/mL; Mujeres: 0,4 a 4,1 ng/mL. |
| ABLCR | ANTIGENOS BACTERIANOS, LÍQUIDO CEFALORRAQUÍDEO (Neisseria meningitidis grupos A, B, C | |
| Plazos | 4 días hábiles |
| Instrucciones al paciente |
N.A.: |
| Método | Aglutinación de partículas |
| Valores de referencia | Negativo |
| ACADR | ANTICUERPOS ANTI - ADRENAL, SUERO | |
| Plazos | 20 Días hábiles |
| Instrucciones al paciente |
Concurrir al laboratorio en condiciones de ayuno de 8 horas |
| Método | IFI (Inmunofluorescencia indirecta). |
| Valores de referencia | Valor de corte 1:20. |
| ACAQU | NMO ANTICUERPOS IgG (AQUAPORINA 4) | |
| Plazos | 15 Días hábiles |
| Instrucciones al paciente |
Concurrir al laboratorio con 8 hs de ayuno |
| Método | CBA (cell-based assay) |
| Valores de referencia | Negativo: Valor de Corte 1/50 |
| ACASC | ÁCIDO ASCORBICO (VITAMINA C), SUERO | |
| Plazos | 11 Días hábiles |
| Instrucciones al paciente |
Concurrir al laboratorio en condiciones de ayuno de 8 horas. |
| Método | EC - Electroforesis capilar |
| Valores de referencia | 0.40 a 2.00 mg/dL Interpretación: Valores por debajo de 0.2 mg/dl indican una deficiencia significativa. Los valores mayores o iguales de 0.2 mg/dl y menor de 0.4 mg/dl son consistentes con un riesgo moderado de deficiencia debido a almacenes de tejido inadecuados. Valores de 0.4 a 2.0 mg/dl indican suministro adecuado. |
| ACBIL | ÁCIDOS BILIARES TOTALES, SUERO | |
| Plazos | 1 día hábil |
| Instrucciones al paciente |
Concurrir al laboratorio en condiciones de ayuno de 8 horas. |
| Método | Enzimático colorimétrico |
| Valores de referencia | 2 a 10 umol/L |
| ACBP | COXSACKIE TOTAL, ANTICUERPOS IgG, SUERO | |
| Plazos | 8 Días hábiles |
| Instrucciones al paciente |
Concurrir al laboratorio en condiciones de ayuno de 8 horas. |
| Método | IFI (Inmunofluorescencia indirecta) |
| Valores de referencia | Menor a 1/10 |